生命科学研究

在生命科学研究中心，您可以掌握最新的关于先进显微镜、成像技术、电镜样品制备和图像分析的前沿应用和创新，涵盖的主题包括细胞生物学、神经科学和癌症研究。希望在这里可以帮助您提升研究能力和精进显微镜在各个科学领域实际应用，并了解徕卡如何通过精确的可视化、图像解读和推进研究进展来赋能您的工作。

福斯特共振能量转移 (FRET)

荧光描述的是分子或原子在通过光的吸收激发电子系统后，自发发射光子的过程。发射的光子通常能量较低，因此波长较长（斯托克斯位移）。例如，蓝光激发可能导致绿色发射。如果第二个荧光分子能够吸收绿色光子，则该分子的发射再次发生斯托克斯位移，例如变为红色。这种再吸收在浓密样品中会导致测量误差（部分“内滤”效应）。在低浓度样品中，再吸收非常罕见。

共聚焦和多光子成像技术仍然是对生物样本进行复杂研究的首选方法。这些技术可将生物样本中的典型结构或动态过程可视化，并依赖于样本中现有的自发荧光物质或合适的荧光染料。传统染色方法的缺点显而易见：标记耗时，染料会随时间褪色。此外，染料会失去强度并改变样本。染料通常会产生光毒性，对样本造成伤害，进而影响实验结果。CARS（相干反斯托克斯拉曼散射）显微镜是一种无需染料的方法，它通过显示结构分子的内在振动对比…

Scheme of a 2D mosaic scan. Drosophila melanogaster (eye section)

马赛克图片

共焦激光扫描显微镜被广泛用于生成细胞、亚细胞结构甚至单分子的高分辨率三维图像。不过，越来越多的科学家正将生物研究的重点从单细胞研究扩展到整个器官和生物体，分析动物体内复杂的相互作用。

共聚焦光学截面厚度

共聚焦显微镜用于光学切片比较厚的样本。最直接的问题是：1. 什么是“比较厚的样本”；2. 光学切片到底有多厚？这两个问题在一定程度上是相关的，即假设一份厚样本至少比光学切片厚10倍。

Section taste buds rabbit, differential interference contrast microscope

光学对比方法

光学对比方法可以轻松检查活体和无色标本。不同的显微技术旨在将光与标本相互作用所产生的相位变化转变为人眼可见的亮度差异的振幅变化。

Modulation contrast visualizes transparent, low-contrast specimens.

集成调制对比度 (IMC)

霍夫曼调制对比已成为观察未染色、低对比生物标本的标准。其创新的技术实现大大简化了操作，提高了使用的灵活性。将调制器集成到现代倒置显微镜的光束路径中，就可以使用各种明视野或相位物镜，而无需选择少量专用物镜。

电生理学和深层组织成像的新标准

神经和肌肉细胞的功能依赖于通过离子通道流动的离子电流。这些离子通道在细胞生理过程中起着关键作用。研究离子通道的一种方法是使用膜片钳技术。这种方法可以详细研究离子通道，并记录不同类型细胞（主要是神经元、肌纤维或胰岛β细胞）的电活动。膜片钳技术由Erwin Neher和Bert…

A portion of an early binocular microscope developed by John Leonhard Riddel in the early 1850s.

体视显微镜的历史

本文概述了从 1600 年至今体视显微镜的发展和演变。直到 19 世纪中叶，所有光学显微镜都是手工制作的。由于无法准确预测透镜的特性，因此必须通过反复试验来制作和测试透镜，直到达到理想的效果。